蛋白酶和淀粉酶活性檢測方法探討
1 蛋白酶活力的測定
1.1 原理
采用福林-酚試劑法。福林-酚試劑在堿性條件下可被酚類化合物還原呈藍(lán)色(鉬藍(lán)和鎢藍(lán)混合物),由于蛋白質(zhì)分子中有含酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸等),可使蛋白質(zhì)及其水解產(chǎn)物呈上述反應(yīng)。因此可利用此原理測定蛋白酶活力。通常以酪蛋白為底物,在一定pH值和溫度條件下,同酶液反應(yīng),經(jīng)一段時(shí)間后終止酶促反應(yīng),經(jīng)離心或過濾除去酪蛋白籌沉淀物后取上清液,用Na2CO3堿化,再加入福林-酚試劑顯色,藍(lán)色的深淺與濾液中生成產(chǎn)物酪氨酸量成正比;酪氨酸含量用分光光度計(jì)在660nm波長處測定,從而計(jì)算出蛋白酶的活力。
1.2 試劑
1.2.l 福林-酚試劑
向2000mL的磨口回流瓶中加入100g鎢酸鈉(Na2WO4?2H2O)、25g鉬酸鈉及700mL的去離子水,再加入50mL85%的磷酸及濃鹽酸l00mL,充分混合后,接上回流冷凝管,以文火回流10h,結(jié)束后再加入150g的硫酸鋰(LiSO4)、50mL去離子水及數(shù)滴溴水,再繼續(xù)沸騰15min,以驅(qū)除過量的溴,冷卻后濾液呈黃綠色(如仍呈綠色,需再重復(fù)滴加溴水的步驟),加去離子水定容至1000mL亂,過濾,濾液置于棕色試劑瓶中,貯于冰箱中可長期保存?zhèn)溆谩4巳芤菏褂脮r(shí)可按1:3比例用去離子水稀釋。
1.2.2 0.4mol/L三氯乙酸(TCA)溶液 精確稱取TCA65.4g,加去離子水定容至1000mL。
1.2.3 0.4mo1/L碳酸鈉溶液 精確稱取無水碳酸鈉42.4g,加去離于水溶解后,定容至1000mL。
1.2.4 pH值3~6醋酸緩沖液
精確取NaAc?3H2O16g與268mL濃度為6mol/L醋酸溶液混合,用去離子水稀釋定容至1000mL。
1.2.5 2%酪蛋白底物緩沖液
1.2.5.1 測試酸性蛋白酶緩沖液
精確稱取酪蛋白20g,加入0.1mol/L氫氧化鈉20mL(用去離子水配制),在水浴中加熱溶解,然后用pH值3.6醋酸緩沖液定容至1000mL。當(dāng)日配用或置于冰箱中保存。
1.2.5.2 測試中性蛋白酶緩沖液 精確稱取酪蛋白20g,置于1000mL三角瓶中,加入0.2mol/L
Na2HPO4溶液(去離子水配制)610mL,在沸水浴中攪拌使其溶解,冷卻后過濾,加入0.2mol/L
Na2HPO4溶液(去離子水配制)390mL,用去離子水定容至1000mL,即成pH7.0、2%酪蛋白溶液。當(dāng)天配用或置于冰箱中保存。
1.2.6 100μg/mL酪氨酸溶液
精確稱取100mg酪氨酸,逐步加入0.lmol/L鹽酸溶解后,用去離于水定容至100mL放入冰箱中保存,臨用時(shí)用去離子水稀釋10倍。
1.3 操作步驟
1.3.1 酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
取18支試管分成6組(每組3支,平行樣),編號(hào),按表1分別加入標(biāo)準(zhǔn)酪氨酸、去離子水、0.4mol/L的碳酸鈉和福林-酚試劑,混勻后,放入40℃水浴保溫20min,然后在721型分光光度計(jì)上進(jìn)行比色創(chuàng)定(波長66Onm),以濃度為Oμg/mL酪氨酸反位液做空白對照。
’ 1.3.2 樣品酶活的測定
精確稱取酶粉5g,充分碾細(xì),加去離子水100mL,在40℃水浴中攪拌30min,充分溶出酶蛋白,然后過濾,留濾液待測。取4支試管編號(hào)(1號(hào)為空白對照),分別加入酶液1mL,1號(hào)管立即加入0.4mol/L
TCA溶液2mL,使酶失活,另3支樣品加入lmL pH
7.0、濃度為2%酪蛋白底物緩沖液(如測酸性蛋白酶活力加pH3.6、2%酪蛋白底物緩沖液),迅速混勻,并立即放入40℃恒溫水浴準(zhǔn)確計(jì)時(shí),保溫1Omin后,立即加入0.4mol/LTCA溶液2mL,終止反應(yīng),同時(shí)向1號(hào)空白管中加入1mL2%酪蛋白底物緩沖液,搖勻,繼續(xù)置于水浴中保溫2Omin,取出離心或過濾除去剩余酪蛋白及酶蛋白沉淀物,然后取各試管濾液1mL,分別移入另4支試管中,再加入0.4mol/L碳酸鈉溶液5nL和己稀釋的福林-酚試劑1mL,搖勻,保溫顯色20min后,進(jìn)行比色測定(波長66Onm)。對照標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算酪氨酸含量。
管號(hào) 標(biāo)準(zhǔn)酪氨酸 去離子水 Na2CO3 福林一酚試劑 酪氨酸含量
(100μg/mL)(mL) (mL) (0.4mol/L)(mL) (mL) (μg/mL)
1 0 1.0 5 1 0
2 0.2 0.8 5 1 20
3 0.4 0.6 5 1 40
4 0.6 0.4 5 1 60
5 0.8 0.2 5 1 80
6 1.0 0 5 1 100
1.4 蛋白酶活力計(jì)算
蛋白酶活力,Ax4xN/l0。
式中:A:對照標(biāo)準(zhǔn)曲線得出的酪氨酸釋放量;4:4機(jī)反應(yīng)液取出1mL;N:酶粉的稀釋倍數(shù);10:反應(yīng)時(shí)間1Omin;蛋白酶活性定義:在一定pH值(pH3.6或7.0)和40℃溫度條件下,每分鐘水解酪蛋白產(chǎn)生1μg酪氨酸定義為一個(gè)蛋白酶活力單位。
2 淀粉酶活力的測定
測定淀粉酶活力的方法有4類,一是測定底物淀粉的消耗量,有粘度法、濁度法和碘-淀粉比色法等;二為生糖法,測定產(chǎn)物葡萄糖的生成量;三為色原底物分解法,四是酶偶聯(lián)法。其中碘-淀粉比色法測淀粉酶活力操作簡便迅速、實(shí)用。
2.1 原理
碘-淀粉比色法淀粉經(jīng)α-淀粉酶催化水解,生成產(chǎn)物為葡萄糖、麥芽糖及糊精,在底物淀粉濃度已知且過量的條件下,反應(yīng)后加入碘液與末被催化水解的淀粉結(jié)合成藍(lán)色復(fù)合物。其藍(lán)色的深淺與未經(jīng)酶促反應(yīng)的空白管比較成比例,從而計(jì)算出淀粉的量,推算肘淀粉酶活力。
2.2 試劑
2.21 底物緩沖液
精確稱,取9.0g;氯化鈉;22。6g無水磷酸二鈉和12.5g無水磷酸二氫鉀,置于約500mL去離子水中力口熱至沸騰溶解。稱取0.4g可溶性淀粉于一小燒杯中,加入10mL去離子水,使其混懸后加人上述沸騰溶液中,冷卻至室溫后加入5mL37%甲醛溶液,用去離子水稀釋至1000mL。此即為pH7.0、酶底物淀粉濃度為0.4g/L的緩沖液。
2.2.2 碘貯存液(0.1mol/L)
稱取1.7835g碘酸鉀和22.5g碘化鉀,溶于去離子水中,再緩慢加人4.5mL濃鹽酸,用去離子水稀釋至500mL,充分混勻,貯棕色瓶中,每月配制新鮮溶液,置冰箱中保存。
2.2.3 碘稀釋液(0.lmol/L) 取碘貯備液用去離子水稀釋10倍,貯棕色瓶中,現(xiàn)用現(xiàn)配。
2.3 操作步驟
稱取酶粉1.0g充分碾細(xì),加去離子水100mL,在40℃水中攪拌30min,充分溶出酶蛋白,過濾,濾液備用。按表2分別加入底物緩沖液、酶濾液、碘稀釋液和去離子水,混勻,于660nm波長處(lcm光徑),以去離子水調(diào)吸光度為零,讀各管吸光度。
表2 試劑用量
加入物 測定管(U)(3支平行樣)空白管(B)
底物緩沖液(40℃預(yù)溫5min,mL) 1.0 1.0
酶濾液(mL)混勻,40℃水浴7.5min 0.2 -
碘稀釋液(mL) 1.0 1.0
去離子水(mL) 6.0 6.2
2.4 淀粉酶活力計(jì)算
淀粉酶活力= 式中:AB:空白管吸光度;AU:測試管吸光度;淀粉酶活性定義:lmL酶濾液中(1g酶粉)的酶,在40℃和底物淀粉作用30min,水解10mg淀粉為1個(gè)淀粉酶活性單位。
3 討論
目前市場上出售的酶制劑種類很多,由于酶的定義和測定方法至今沒有統(tǒng)一,不同的生產(chǎn)廠家采用標(biāo)準(zhǔn)和定義往往各不相同,產(chǎn)品質(zhì)量說明也就缺少科學(xué)依據(jù)。本文簡介了蛋白酶和淀粉酶活性定義和測定方法,供同行共同探討,以便找出更加科學(xué)、合理、統(tǒng)一的簡便易行的酶活測定方法,促進(jìn)酶制劑在飼料工業(yè)中的發(fā)展。
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